聚蔗糖 Polysucrose
聚蔗糖
化学名: Dextran, epichlorohydrin cross-linked polymer
商品名: Polysucrose
CAS nr: 68954-24-5
商品名: Polysucrose
CAS nr: 68954-24-5
聚蔗糖是由蔗糖和环氧氯丙烷共聚合成,然后通过超滤或分级沉淀进行纯化。 分子高度支化,羟基含量高,在水溶液中溶解性良好。聚蔗糖是一个理想的中性球体,具有良好的生物相容性。聚蔗糖不含离子化基团,在生理条件下与生物体可以相容。对于酸,聚蔗糖比葡聚糖更为敏感,因此在pH为酸性下工作时须谨慎。 检查所有批次的分子量、取代度和干燥失重。TdB提供分子量20 kDa到1000 kDa的聚蔗糖。 聚蔗糖为干燥的粉末,亲水性极强。
图1 聚蔗糖分子片段
合成与结构
聚蔗糖是由蔗糖和环氧氯丙烷反应,再用超滤或分级沉淀法纯化产物,合成产生的游离杂质在纯化过程中被去除。虽然详细的结构尚未阐明,但合成明显导致高支化结构,产品性质很大程度由高含量羟基所决定。
物理性质
聚蔗糖,是一种中性分子,极易溶解于水和电解质溶液,溶液浓度可超过50%(w/v)。有许多刊物论及聚蔗糖的分子构象和性质。大多数认为,聚蔗糖分子是介于固球体和无规则弹性线圈(1-5)之间。与葡聚糖相比,聚蔗糖结构更接近球形,柔韧性较差。在表1(下表)中,对葡聚糖和聚蔗糖的斯托克斯半径进行比较,反映了分子柔韧性差异。因此,当用凝胶渗透色谱法(GPC)比较具有相似分子量的聚蔗糖和葡聚糖组分时,聚蔗糖的流体动力学体积较小,对应保留时间较长。
MW *103
|
Dextran
Stokes radius |
Polysucrose
Stokes radius |
Albumin
Stokes radius |
500
|
147
|
106
|
-
|
70
|
58
|
49.5
|
35
|
49
|
44.5
|
40
|
-
|
表 1. 聚蔗糖和葡聚糖以斯托克半径表示的分子尺寸
与同等浓度的蔗糖溶液相比,聚蔗糖溶液的渗透压非常低。因此,10%的聚蔗糖70溶液的渗透压为3 mOs/kg,而10%蔗糖的渗透压为150 mOs/kg。
聚蔗糖的性质包括:
易溶于水和电解质溶液
清彻、稳定的溶液
无电荷基团 - 中性聚合物
优异的生物相容性
优异的稳定性 - 可高压灭菌
来自可再生资源,在生态系统中很容易降解
易溶于水和电解质溶液
清彻、稳定的溶液
无电荷基团 - 中性聚合物
优异的生物相容性
优异的稳定性 - 可高压灭菌
来自可再生资源,在生态系统中很容易降解
稳定性
聚蔗糖粉末在环境温度下储存在密闭容器中至少能稳定6年。只有在低pH(<5)和高温下,聚蔗糖才有水解的风险。聚蔗糖本身可以在中性和弱碱性的pH下高压灭菌。
毒性
平均分子量在100000到500000之间的聚蔗糖,即使在实验动物静脉注射剂量高达12g/kg时,具有良好的耐受性(未发表的研究)。聚蔗糖不会在血液中降解,在肝脏、脾脏和肾脏中蓄积。
应用
聚蔗糖具有良好的与细胞、病毒、微生物的生物相容性,已在分离技术中应用了几十年。
许多研究者认为聚蔗糖是研究肾小球生理学的合适分子,因为它具有很好生物相容性,不易在血液中降解,而且它的构象特性更类似蛋白质。聚蔗糖(尤其是FITC和TRITC标记聚蔗糖)已广泛应用于血管通透性研究,尤其是肾小球渗透性研究,并已全面回顾(3)。以下是该领域众多出版物中的一部分(6-12)。聚蔗糖已用于细胞和细胞器的梯度离心、核酸杂交、半抗原载体、浓缩透析、支持细胞系生长和相分离(参见GE Healthcare和Sigma-Aldrich的数据文件)。
产品列表
产品编号
|
品名
|
分子量(kDa)
|
包装
|
Polysucrose 20
|
20
|
1 g
|
|
Polysucrose 40
|
40
|
1 g
|
|
Polysucrose 50
|
50
|
1 g
|
|
Polysucrose 1000
|
1000
|
1 g
|
参考文献
1. G.D.Davidson and W.M.Deen, Hindered diffusion of water-soluble molecules in membranes. Macromolecules, 1988; 21, 3474-3481.
2. J.D.Oliver, W.H.Fissell, C.L.Hofmann and R.Smith and M.H.Chen,, Size and conformation of Ficoll as determined by size-exclusion chromatography followed by multiangle light scattering. Am.J.Physiol. Renal Physiol. 2010; 298, F205-8.
3. D.Venturoli and B.Rippe, Ficoll and dextran vs. globular proteins as probes for testing glomerular permselectivity; effects of molecular size, shape, charge and deformability, Am.J.Physiol. Renal Physiol., 2005; 25, 77-84. 4.
4. J.D.Oliver, S.Andersson, J.L.Troy et al. Determination of glomerular size-selectivity in the normal rat with Ficoll. J.Am.Soc.Nephrol., 1992; 3, 214-22.
5. C.Rippe, D.Asgeirsson, D.Venturoli et al., Effects of glomerular filtration rate on the Ficoll sieving coefficients in rats, Kidney, 2006; 69, 1326-32.
6. M.Ohlsson, J.S?rensson, and B.Haraldsson, Glomerular size and charge selectivity in the rat as revealed by FITC-Ficoll and albumin, Am.J.Physiol.Renal Physiol., 2001; 278, F992-3
7. D.Asgeirsson, D.Venturoli, B.Rippe and C.Rippe, Increased glomerular permeability to negatively charged Ficoll relative to neutral Ficoll in rats, Am.J.Physiol.Renal Physiol., 2006, 291, F1083-9.
8. M.A.Guimaraes, J.Nikolovski, L.M.Pratt et al., Anomalous fractional clearance of negatively charged Ficoll relative to uncharged Ficoll, Am.J.Physiol.Renal Physiol., 2003, 285, F118-24.
9. C.Rippe, A.Rippe, O.Torffvit and B.Rippe, Size and charge selectivity of the glomerular filter in early experimental diabetes in rats, Am..J.Physiol. Renal Physiol., 2007; 293, F1533-8.
10. B.I.Rosengren, A.Rippe, C.Rippe etal., Transvascular protein transport in mice lacking endothelial caveolae, Am.J.Physiol.Heart Circ. Physiol., 2006; 291, H1371-7.
11. J.Axelsson, I.Mahmutovic, B.Rippe etal., Loss of size selectivity of the glomerular filtration barrier in rats following laparotomy and muscle trauma, Am.J.Physiol. Renal Physiol.,2009; 297, F577-82.
12. M.P.Bohrer, G.D.Patterson, P.J.Carroll, Hindered diffusion of dextran and Ficoll in microporous membranes, Macromolecules, 1984; 17, 1170-1173.
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