疏水层析介质——层析介质优选西宝生物
参数
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指标
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基质
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6%交联琼脂糖凝胶
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功能基及配基密度
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Butyl-S
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10 μmol/mL wet gel |
Butyl
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40 μmol/mL wet gel |
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Phenyl (high)
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40 μmol/mL wet gel |
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Phenyl (low)
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25 μmol/mL wet gel |
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形状
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球形
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介质平均粒径
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90 μm (45-165) |
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最高流速(25℃)
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600 cm/h
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推荐流速
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<150 cm/h
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最高耐压
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0.3 MPa (3 bar) |
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pH稳定性
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3-13(长时间);2-14(短时间)
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化学稳定性
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室温下1M NaOH、0.01M HCl、6M盐酸胍、8M脲浸泡7天,性能无明显变化
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物理稳定性
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溶液的pH或离子强度影响介质的体积变化率<2%
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保存
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4-30 ℃(20%乙醇)
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层析操作通常包括装柱、平衡、进料、淋洗、洗脱、再生等步骤。具体的操作方法如下(以20 cm×1.6 cm I.D., H=7.5 cm, CV=15 mL为例):
- 平衡:用5~10CV的平衡缓冲液(Buffer A,如50 mM PB+1.0-2.0 M (NH4)2SO4, pH 7.0,具体的缓冲体系、盐的种类及浓度应根据目标蛋白的稳定性及疏水性、层析介质的疏水性进行筛选和优化)以2-5 ml/min的流速平衡层析柱,至流出液电导和pH不变(与平衡液一致)。
- 进料:样品缓冲液应尽可能与平衡液一致。固体样品可用平衡液溶解配制;低浓度样品溶液可用平衡液透析或添加相应量的盐;高浓度样品溶液可用平衡液稀释。为了避免堵塞层析柱,样品应经离心或微滤(0.45 μm)处理。进料量根据介质的载量和料液中目标蛋白的含量计算。
- 淋洗:以2-5 mL/min的流速上样,并继续用平衡缓冲液淋洗至基线。
- 洗脱:用洗脱缓冲液(Buffer B,如50 mM PB,pH7.0)洗脱(可采用线性梯度洗脱或阶越梯度洗脱),收集流出液。
- 再生:每次层析之后可用3 CV低离子强度的缓冲液以2-5 mL/min的流速再生层析柱,除去疏水结合较强(可逆结合)的蛋白,然后依次用3 CV 的水冲洗,5 CV的平衡缓冲液平衡。
- 原位清洗:介质使用数次(具体次数与原料的种类和来源及实验要求有关)后,需要对介质进行在位清洗,除去不可逆结合的蛋白和其他物质:
(1)对于通过离子键强结合的蛋白,可用2 M NaCl以1-2 mL/min的流速反向清洗10-15 min;(2)对沉淀蛋白、疏水性结合的蛋白、脂蛋白,可用1 M NaOH以1-2 mL/min的流速反向冲洗3-4 CV;(3)对强疏水性结合的蛋白、脂蛋白和脂类物质,可用70%乙醇或30%异丙醇以1-2 mL/min的流速反向冲洗3-4 CV(使用高浓度的有机溶剂时,为了避免产生气泡,应采用逐步增加有机溶剂浓度的方法)。
- 保存:4-30℃下20%乙醇中保存(4℃下有利于长期保存);层析柱中的介质可用20%的乙醇冲洗后保存于4-30℃。
- 其它注意事项:在装柱、使用和保存柱子的时候,要避免柱子流干或密封不严,防止气泡进入。
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