西宝生物金属螯合高流速琼脂糖介质（Ni-IDA QZT 6FF）是将亚氨基二乙酸（IDA）键合在高流速琼脂糖微球上，并螯合金属离子Ni²⁺而形成的一种亲和层析介质。影响蛋白质/多肽与金属离子螯合力大小的因素主要是蛋白质表面可结合的氨基酸（种类、数目和分布）、金属离子的种类和密度、层析条件（pH、盐的种类和浓度、添加剂等）。IMAC具有吸附容量大、选择性好、分辨率高、易于再生、成本较低等优点，广泛用于生物制药和生物工程下游蛋白质、核酸及多肽的分离纯化，尤其是组氨酸标记蛋白质的分离纯化。

 

表1. Ni-IDA QZT 6FF的理化性质及特征参数

参数	指标
基质	6%交联琼脂糖凝胶
配基	-N(CH2COOH)2   (IDA)
形状	球形
平均粒径	90 μm (45-165)
金属离子密度	~40 μmol Ni2+/mL wet gel
动态载量a	~25-30 mg His-Tagged LDH/mL wet gel
推荐流速b	5-10 mL/min   (150-300 cm/h)
流速高达b	20 mL/min (600   cm/h)
耐压高达b	0.3 MPa (3 bar)
化学稳定性c	0.01 M HCl、0.1 M NaOH（37 °C, 7天）；1 M NaOH、70%乙酸（12   h）；30%异丙醇（30 min）；2% SDS（1 h）
避免使用的试剂	螯合剂，如EDTA、EGTA、柠檬酸等
pH稳定性c	2-14（短期，2 h）；3-12（长期，7天）
储存条件	20%乙醇，4-30 ℃

样品：平衡缓冲液中含1mg/mL histidine-tagged LDH（Mr 140000）；

b：流动相为纯水，室温下操作，柱尺寸为10.0*1.6 cm I.D.，CV=20.0 mL。

试剂类型	试剂名称及浓度
还原试剂	10 mM β-巯基乙醇
变性剂	8 M 尿素、6 M 盐酸胍
去污剂	2%Triton X-100、2%Tween-20、2%NP-40、2%胆酸盐、1%CHAPS
缓冲液组分	50 mM 磷酸钠, pH7.4、100 mM Tris-HCl，pH7.4、100 mM Tris-acetate, pH7.4、100 mM HEPES，pH7.4、100 mM MOPS，pH7.4、100 mM 醋酸钠，pH7.4
其它试剂	20%乙醇、50%甘油、0.1 M Na2SO4、1.5 M NaCl、1 mM EDTA、60 mM 醋酸

金属螯合层析可采用重力柱、蠕动泵和层析系统等模式进行操作。以层析系统操作模式为例，层析操作通常包括装柱、螯合金属离子、平衡、进料、淋洗、洗脱、再生等步骤（具体操作条件以10.0 * 1.6 cm I.D.，CV=20.0 mL层析柱为例）。

1. 装柱：

（1）Ni-IDA QZT 6FF介质通常在4 ℃下保存于20%乙醇中，使用前先取出适量（22 mL介质）介质放置于烧杯中，用纯水置换掉20%的乙醇溶液，静置沉降后倒掉部分上清至凝胶浓度约为60%（匀浆液体积约为36 mL），搅拌均匀后备用（匀浆液温度尽量接近室温）。

（2）清洗层析柱及配件，排气泡后拧紧层析柱底端的出口，加入适量纯水至0.2-0.5 cm液位高度。

（3）用玻璃棒将介质匀浆液轻轻搅拌均匀（避免引入气泡），然后用玻璃棒导流将匀浆液沿着柱内壁一次性倒入柱内，尽量避免产生气泡。介质在层析柱内自由沉降后（30 min），连结好柱子顶端柱头（预先去除管道内及接口处的气泡）。

（4）打开泵，先用纯水以2.5 mL/min的流速压柱（10 min至胶面），然后再以4mL/min的流速压柱，使柱床稳定，调节顶端柱头至胶面处。用2~3倍柱体积（CV）的缓冲液平衡柱子。

层析柱	装柱流速（mL/min）		使用流速高值（mL/min）
	第一步	第二步
20 mm×10 mm I.D.	0.9	4.7	2
20 mm×16mm I.D.	2.5	8.7	5
20 mm×26 mm I.D.	6.6	23	13
20 mm×50 mm I.D.	24.5	85	49

（2）选择合适的金属离子（Cu²⁺、Zn²⁺、Ni²⁺、Co²⁺、Fe³⁺等），溶解在中性或弱酸性溶液中，浓度为用0.2 mol/L，过滤后使用，其中Fe³⁺必须在低pH（3.0）下鳌合，以防止Fe³⁺产生沉淀；

3. 平衡：用5-10 CV的平衡缓冲液平衡层析柱，至流出液电导和pH保持不变（与平衡液一致）。实际操作中，一般选用中性/弱碱性（pH 7-8）的高盐（0.15-1.0 M NaCl或其它中性盐）缓冲液。其中常用磷酸盐缓冲体系，如20 mM PB+0.5 M NaCl, pH 7.4。对于结合力较强的带组氨酸标记的蛋白质，平衡缓冲液中可加入低浓度（5-50 mM）的咪唑（具体浓度需要根据实验现象进行优化）。

4. 进料：样品缓冲液应尽可能与平衡液一致。固体样品可用平衡液溶解配制；低浓度样品溶液可用平衡液透析；高浓度样品溶液可用平衡液稀释。为了避免堵塞层析柱，样品应经离心或微滤处理。为了减少杂蛋白在层析柱上的吸附，可在确保目标蛋白吸附的情况下适当增加样品缓冲液中的咪唑（具体浓度根据优化结果确定，并与平衡缓冲液的咪唑浓度保持一致）。

5. 淋洗：上样完毕后继续用平衡缓冲液淋洗至基线。

6. 洗脱：一般采用竞争试剂咪唑进行洗脱，并在洗脱缓冲液中加入一定浓度（0.15-1.0 M）的NaCl以抑制离子交换作用。洗脱缓冲液一般为20 mM PB + 0.5 M NaCl + 0.5 M咪唑，pH 7.4。可采用线性梯度或阶越式梯度洗脱（洗脱时所需的咪唑浓度与所纯化蛋白的结合强度有关，可通过洗脱浓度优化得到）。对于包涵体蛋白，相应地可在平衡、上样和洗脱的缓冲液中加入8 M Urea或6 M Gua-HCl。洗脱后再对变性蛋白进行复性。

7. 再生：介质使用数次（约3-20次，具体与原料来源、样品体积等有关）后，或者螯合其它金属离子前，需要进行再生处理。首先用2-3 CV的纯水清洗层析柱，然后用5 CV的20 mM PB + 0.5 M NaCl +50 mM EDTA，pH 7.4淋洗柱子，再分别用5 CV的20 mM PB + 0.5 M NaCl，pH 7.40溶液和5 CV的纯水清洗柱子，去除柱上残留的EDTA。螯合金属离子的操作按照“3.2”所述进行。若有变性蛋白质或脂类物质在再生过程中未能有效去除，可用在位清洗（cleaning in place, CIP）的方法去除。

8. 原位清洗：为了避免不同样品间的相互干扰，或者当介质污染比较严重时（反压增加），需要对介质进行在位清洗。在位清洗前，需要预先去除介质上鳌合的金属离子。在位清洗时，可采用反向冲洗的方法。

（3）对疏水性结合的蛋白、脂蛋白和脂类物质，可用5-10 CV的70%乙醇或30%异丙醇清洗（15-20 min），并用5-10 CV的纯水冲洗。

9. 其它注意事项：在使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干，气泡进入。

Ni-IDA QZT 6FF纯化His-tag LDH。

层析介质：Ni-IDA QZT 6FF介质（10.0 cm × 1.6 cm I.D., CV=20 mL）；

样品：His-tag LDH发酵液；

平衡缓冲液：20 mM PB + 0.15 M NaCl + 50 mM 咪唑, pH 7.4；

洗脱缓冲液：20 mM PB + 0.15 M NaCl + 0.5 M 咪唑, pH 7.4；

流速：5 mL/min；

进料量：60 mL。

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